Ваз 2114 пневмо: Доступ ограничен: проблема с IP

Сервис объявлений OLX: сайт объявлений в Украине

Алексеевка Сегодня 09:29

Киев, Святошинский Сегодня 09:29

Кременчуг Сегодня 09:29

Пневматическая подвеска на ВАЗ 2109

В этой статье рассматривается способ установки пневматической подвески без помощи профессионалов.

Начнем с того, что пнемноподвеска подразумевает собой замену упругих элементов системы подрессоривания. К ним относятся рессоры и пружины на пневмобаллоны.

Такое усовершенствование имеет следующие преимущества:

  • возможность выбора желаемой жесткости подвески, клиренса;
  • увеличение максимально допустимой нагрузки автомобиля;
  • улучшение технических характеристик;
  • совместимость с амортизатором и стабилизатором поперечной устойчивости;
  • наличие специального пульта для управления пневматической системой подрессоривания.

Установка такой системы в данном проекте производится для изделия отечественного производителя – ВАЗ-2109. Основной целью проекта является сборка недорогой пневматической подвески, отталкиваясь от имеющихся стоек, поскольку у большинства могут возникнуть некоторые сложности, связанные с токарными работами.

Рассматриваемый способ установки можно использовать и для других моделей ВАЗ: 2108, 2110, 2112, 2114, Приора и так далее (подойдет для всех автомобилей, обладающих аналогичными стойками).

Подготовка к установке

Прежде, чем преступить к установке системы пневматического подрессоривания, следует подготовить следующие элементы:

  • компрессор модели Falcon 870;
  • 13 фитингов;
  • 4 электромагнитных клапана;
  • 2 манометра;
  • 12 трубок диаметром 6мм, выполненных из пластика;
  • 2 кнопки;
  • реле;
  • провод и клеммы;
  • передние и задние пневматические стойки;
  • 2 гибких шланга, имеющих металлизированную оболочку;
  • 2 резиновых шланга с метрической резьбой М10.

В нашем случае был выбран компрессор Falcon 870. Он дешевле популярного Беркута R20, но очень даже надежный, как показывает практика.

Перед началом установки это устройство подверглось некоторым изменениям. Поскольку компрессор устанавливается стационарно, потребность в специальной ручке для переноски отпадает. Следовательно, она убирается. Далее в корпус устанавливается фитинг, при помощи которого через пластиковую трубку будет осуществляться подача воздуха. Кроме этого следует отказаться от нижней поверхности компрессора.

Последовательность подключения пневмоподвески

Изначально, следует разобрать обычную стойку (в будущем пригодятся пригодится только ступица и элемент, ограничивающий движение опоры,). Снятие стойки начинается с вывешивания колеса, далее откручивается гайка, расположенная на наконечнике рулевой тяги, и при помощи специального инструмента вынимается эта деталь. Потом откручиваются две гайки, при помощи которых стойка крепится к поворотному кулаку, болты и еще три гайки, выступающие в качестве крепления верхней опоры стойки. Затем снимается тормозной шланг, расположенный в кронштейне стойки. После откручивания всех гаек и болтов стойка спокойно снимается.

Теперь, используя инструмент для демонтажа стоек и стяжки, необходимо сжать пружины и открутить гайку, находящуюся на амортизаторном штоке. Далее, взяв пневматическую стойку для ВАЗ-2109, на шток следует установить верхнюю опору, а также ограничительный элемент хода верхней опоры и закрутить гайку.

Установка пневмостойки на ВАЗ-2109 происходит в обратной последовательности ее снятия, то есть верхняя опора прикручивается тремя гайками и двумя болтами к кулаку поворотному, а затем на место возвращается рулевой наконечник, который также прикручивается. На кронштейн устанавливается тормозная трубка.

Подвод воздуха к установленной пневматической стойке ВАЗ-2109 осуществляется при помощи шланга с металлизированной оболочкой, надежно защищенного от перетирания. В результате такой модернизации придется произвести регулировку развала стоек. Для этого в самом начале, когда вы только приступите к снятию пружинной стойки, рекомендуется как-то закрепить, сфотографировать или просто запомнить в каком положении находился регулировочный болт (предназначен для фиксирования поворотного кулака). В процессе установки необходимо выставить болт в первоначальное положение.

Оцените статью: Поделитесь с друзьями!

Пневмоподвеска ВАЗ передний привод 1118 Калина, задняя ось

Пневмоподвеска (пневморессора) для ВАЗ передний привод 2108-2118, Калина, Приора, Гранта задняя ось, Aride является отличным решением для увеличения грузоподъемности малотоннажного коммерческого автомобиля.

И дает автомобилю ряд преимуществ по сравнению со штатной рессорной подвеской или штатной пружинной подвеской.

1.    Снижение износа рессор и амортизаторов (штатные рессоры на вашем автомобиле прослужат дольше, т.к. пневпоподвеска снизит нагрузку на них, а также на другие элементы подвески)

2.    Устранение шумов и вибрация подвески и ударов отбойника при перегрузе (пневмоподвеска полностью исключает ситуация, когда коммерческий автомобиль ложится на отбойники)

3.    Возможность установить пневмоподвеску на уставшие рессоры (после установки пневмоподвески рессоры требующие замены прослужат еще долго)

4.    Правильное положение кузова при любой нагрузке (всегда горизонтальное положение кузова коммерческого автомобиля в независимости от нагрузки, а это правильная работа головного света и уменьшение тормозного пути)

5.    Уменьшение кренов и раскачивания автомобиля (пневмоподвеска не дает автомобилю кренится на перегруженный борт, и всегда находится в горизонтальном положении)

6.     Увеличение комфорта для водителя и пассажиров (значительное увеличение комфорта при езде на автомобили по плохим и неровным дорогам, как для водителя, так и для пассажиров (на пассажирских микроавтобусах)

7.    Увеличение прибыли от перевозок (пневмоподвеска – пневморессора – это возможность перевезти в 1.5 раза больше груза за 1 рейс + экономия на замене рессор и штрафах ГИБДД за перегруз

8.    Возможность управлять свесом автомобиля при загрузке и выгрузке (регулировка заднего клиренса для выравнивания пола будки коммерческого автомобиля с уровнем пола пандуса для удобной загрузки)

9.    Высокий срок службы пневмоподвески (пневмоподвеска не требует никакого дополнительно обслуживания, и эффективно работает в течении 5 — 6 лет при любых условиях эксплуатации будь то мороз, грязь, соли и реагенты. Рабочее давление до 15 атмосфер)

10. Возможно увеличение комфорта и мягкости хода

11. Устраняется эффект «Козления»

 

Комплект поставки

Штатный комплект вспомогательной пневмоподвески на заднюю ось под установку в дополнение к рессоре для автомобиля ВАЗ передний привод 2108-2118, Калина, Приора, Гранта задняя ось, Aride состоит из:

  • Двух пневмоэлементов c грузоподъемностью каждого элемента 1100 кг
  • Комплекта кронштейнов (брекетов) под ключ для крепления подушки на рессору или мост и верхнего крепления на раму (или на раму вместо отбойника)
  • Набора необходимых гаек, болтов и шайб для крепления
  • Шланга длиной 7 метров для пневматических систем
  • Пневматических фитингов для соединения трубки
  • Штуцера для подкачки пневмоподушек любым компрессором
  • Инструкции по установке

 

Давление в пневмоподвеске (пневморессорах) вы можете регулировать любым удобным для вас компрессором накачивая пневмоподушки через штуцер, идущий в комплекте, к штуцеру возможно приобрести манометр для контроля давления в пневмоподвеске. Рекомендованное рабочее давление в пневматических подушка составят 1 – 8 атмосфер. Для более удобной и простой эксплуатация пневмоподвески рекомендуется приобрести систему управления на 1 или 2 контура, с ресивером или без ресивера.

 

Рекомендации по установке, обслуживанию и эксплуатации

При установке оборудования, необходимо исключить наличие элементов, препятствующих свободной работе пневмоподушек и питающих магистралей. После сборки проверить систему на наличие утечек воздуха. Повторная проверка на утечки через 100км после установки. Не допускать снижения давления в пневмоподушках ниже значения 1 бар.

Изменение показаний манометра (не входит в состав осевого комплекта) в сторону уменьшения значений сигнализирует об утечках воздуха в резьбовых соединениях пневмоэлементов (пневмоподушки), соединения пневматической магистрали с компонентами системы.

Средство для диагностики утечек — мыльный раствор воды. При обнаружении утечки, устранить её подтяжкой резьбового соединения минимальным усилием или совершить действия разборки / сборки узла с применением герметизирующего материала (ФУМ-лента, нить, резьбовой герметик) Допускается падение давления в системе на 1 бар. в течении 72х часов (положение ГОСТ).

Периодическая мойка пневмоэлементов значительно сокращает вероятность их выхода из строя от налипающего абразива (песок, камни, грязь).

 

Применимость комплекта пневмоподвески к автомобилям

1984 — 2014 ВАЗ (Lada) 2108 Лада-Спутник/Lada Samara

1987 — 2011 ВАЗ (Lada) 2109 Лада-Спутник/Lada Samara

1990 — 2011 ВАЗ (Lada) 21099

1998 — 2014 ВАЗ (Lada) 2111

2004 — 2013 ВАЗ (Lada) 2113

2001 — 2013 ВАЗ (Lada) 2114

1997 — 2012 ВАЗ (Lada) 2115

2011 — 2015 ВАЗ (Lada) Granta (Гранта)

2004 — 2015 ВАЗ (Lada) Kalina (Калина)

2007 — 2015 ВАЗ (Lada) Priora (Приора)

1995 — 2014 ВАЗ (Lada) 2110

 

Произошла ошибка при настройке пользовательского файла cookie

Этот сайт использует файлы cookie для повышения производительности. Если ваш браузер не принимает файлы cookie, вы не можете просматривать этот сайт.


Настройка браузера на прием файлов cookie

Существует множество причин, по которым файл cookie не может быть установлен правильно. Ниже приведены наиболее распространенные причины:

  • В вашем браузере отключены файлы cookie. Вам необходимо сбросить настройки браузера, чтобы принять файлы cookie, или спросить вас, хотите ли вы принимать файлы cookie.
  • Ваш браузер спрашивает, хотите ли вы принимать файлы cookie, и вы отказались. Чтобы принять файлы cookie с этого сайта, нажмите кнопку «Назад» и примите файл cookie.
  • Ваш браузер не поддерживает файлы cookie. Попробуйте другой браузер, если вы подозреваете это.
  • Дата на вашем компьютере в прошлом. Если часы вашего компьютера показывают дату до 1 января 1970 г., браузер автоматически забудет файл cookie. Чтобы это исправить, установите правильное время и дату на своем компьютере.
  • Вы установили приложение, которое отслеживает или блокирует установку файлов cookie. Вы должны отключить приложение при входе в систему или проконсультироваться с системным администратором.

Почему этому сайту требуются файлы cookie?

Этот сайт использует файлы cookie для повышения производительности, запоминая, что вы вошли в систему, когда переходите со страницы на страницу. Предоставить доступ без файлов cookie потребует от сайта создания нового сеанса для каждой посещаемой вами страницы, что замедляет работу системы до неприемлемого уровня.


Что сохраняется в файле cookie?

Этот сайт не хранит ничего, кроме автоматически сгенерированного идентификатора сеанса в файле cookie; никакая другая информация не фиксируется.

Как правило, в файле cookie может храниться только та информация, которую вы предоставляете, или выбор, который вы делаете при посещении веб-сайта. Например, сайт не может определить ваше имя электронной почты, если вы не решите ввести его. Разрешение веб-сайту создавать файлы cookie не дает этому или любому другому сайту доступ к остальной части вашего компьютера, и только сайт, создавший файл cookie, может его прочитать.

Влияние иммунизации против столбняка, дифтерии и бесклеточного коклюша во время беременности на последующую сероответную реакцию на иммунизацию младенцев: результаты крупного рандомизированного плацебо-контролируемого исследования

https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2019.10.104Get rights and content

Highlights

Младенцы от матерей, участвовавших в исследовании иммунизации матерей против коклюша IV фазы (NCT02377349), получили первичную серию шестивалентной DTaP и PCV13.

Высокие уровни коклюшных антител, переданных матери, сохранялись у младенцев от матерей, вакцинированных Tdap, до 2–3 месяцев после рождения.

Эти коклюшные антитела, перенесенные матерью, влияли на иммунный ответ ребенка на коклюшные компоненты первичной серии DTaP.

Клиническая значимость этого вмешательства остается неизвестной.

Abstract

Исходная информация

Иммунизация против коклюша во время беременности приводит к высоким концентрациям коклюшных антител у младенцев раннего возраста, но может влиять на иммунный ответ младенцев на постнатальную иммунизацию.

Методы

В этом многострановом открытом исследовании IV фазы оценивали иммуногенность и безопасность первичной вакцинации младенцев вакциной DTaP-HepB-IPV/Hib и 13-валентной пневмококковой конъюгированной вакциной (PCV13). Зарегистрированные младенцы (в возрасте 6–14 недель) родились от матерей, которые были рандомизированы для получения трехкомпонентной бесклеточной вакцины против дифтерии, столбняка и коклюша с пониженным содержанием антигена (группа Tdap) или плацебо (контрольная группа) во время беременности (27 0/ 7 –36 6/7 недели беременности) с перекрестной иммунизацией после родов. Все младенцы получили 2 или 3 дозы DTaP-HepB-IPV/Hib и PCV13 в соответствии с национальными календарями. Иммуногенность оценивали у детей до и через 1 месяц после первичной вакцинации. Основная цель состояла в том, чтобы оценить уровни серопротекции/ответа на вакцину для антигенов DTaP-HepB-IPV/Hib через 1 месяц после первичной вакцинации.

Результаты

Вакцинирован 601 ребенок (группа Tdap: 296; контрольная группа: 305). Через месяц после примирования показатели серопротекции составили 100% (дифтерия, столбняк), ≥98,5% (гепатит В), ≥95.9% (полиомиелит) и ≥94,5% (Hib) в обеих группах. Частота ответа на вакцину против антигенов коклюша была значительно ниже у младенцев, матери которых получали Tdap во время беременности (37,5–77,1%), по сравнению с плацебо (90,0–99,2%). Частота запрошенных и незапрошенных нежелательных явлений была одинаковой между группами. Серьезные нежелательные явления наблюдались у 2,4% (группа Tdap) и 5,6% (контрольная группа) младенцев, ни одно из них не было связано с вакцинацией.

Выводы

Коклюшные антитела, перенесенные во время беременности, могут снижать риск коклюшной инфекции в первые месяцы жизни, но нарушать способность младенцев вырабатывать коклюшные антитела, клиническое значение которых остается неизвестным.Результаты по безопасности и реактогенности соответствовали предыдущему опыту.

Регистрация клинических испытаний: ClinicalTrials.gov: NCT02422264.

Ключевые слова

Ключевые слова

ключевых слов

6

TDAP Vaccine

CONTUSSIS

MATHNAL Immentization

Blunning

младенцев

5 Сокращения CPS

Капсульный полисахарид

DTAP-HEPB-IPV / HIB

Diphtheria-Tetanus-Acellular Capeussis-Hepatitis B Вирус-инактивированный полиовирус и Haemophilus Phangeenzae Тип B Вакцина

ECL

Электрохилюминеминеминеминесценция

ELISA

Ферментно-связанный Иммуносорбирующий анализ

FHA

Циплющий гемагглютинин

HBS

Гепатит B Поверхностный антиген

GMC

Геометрическая средняя концентрация

Hib

Haemophilus Phangeenzae тип B

LLOQ

нижний предел количественного определения

PCV13

13-валентная пневмококковая конъюгированная вакцина

PRP

полирибозилрибитолфосфат

RCT

рандомизированное контролируемое исследование

Tdap

дифтерийно-столбнячно-коклюшная вакцина

статей (0)

© 2019 GlaxoSmithKline Biologicals S. A. Опубликовано Elsevier Ltd.

Рекомендуемые статьи

Ссылки на статьи

Фитохимическое исследование и антимикробная оценка Parrotiopsis jacquemontiana (Decne) Rehder | BMC Complementary Medicine and Therapies

Сбор и идентификация растительного материала

Листья P. jacquemontiana были собраны в лесах Верхнего Дира, Пакистан, в мае-июне 2016 года. затем таксономически идентифицирован и подтвержден старшим систематиком растений Сайедом Афзалом Шахом из отдела наук о растениях Университета Куэйд-и-Азам, Исламабад, Пакистан.Образец ваучера (063214) был депонирован в Гербарии Пакистана, Университет Куэйд-и-Азам, Исламабад, Пакистан.

Подготовка растительного материала и фракционирование

Собранные листья очищали от частиц пыли и затем помещали на сушку в тени примерно на две-три недели. Образец высушенного растения затем измельчали ​​до порошка тонкой текстуры, подвергая его воздействию мельницы Willy с размером ячеек 60. Около 1 кг порошка растения экстрагировали 5 л 95% метанола (трижды) в течение 72 ч, а затем фильтровали с помощью Whatman No.1 фильтровальная бумага. Фильтрат объединяли и концентрировали на роторном испарителе при пониженном давлении при 40°C. Для целей фракционирования навеску (50 г) экстракта (PJM) суспендировали в дистиллированной воде (400 мл) и подвергали разделению жидкость-жидкость с использованием различных растворителей (400 мл) для разделения соединений с возрастающей полярностью. . Фракционирование каждым растворителем проводили трижды. Растворители использовали в следующем порядке: н-гексан (PJH), хлороформ (PJC), этилацетат (PJE) и н-бутанол (PJB), а растворимый остаточный водный материал называли водной фракцией (PJA).Соответствующие растворители снова выпаривали на роторном испарителе при пониженном давлении. Фракции сушили, собирали, взвешивали и хранили при 4 °C до проявления фитохимической и антимикробной активности.

Скрининг фитохимических компонентов

Фитохимические компоненты PJM и его производных фракций были проанализированы качественно с использованием различных стандартизированных процедур тестирования [17,18,19,20,21].

Обнаружение алкалоидов

Тест Майера

В соответствии с этой процедурой испытания 2 мл концентрированной HCl добавляли к 2 мл соответствующих образцов растительного экстракта с последующим добавлением нескольких капель реактива Майера.Либо образование белого осадка, либо зеленая окраска подтверждали наличие алкалоидов в исследуемом образце.

Тест Хагера

Для этой процедуры тестирования несколько капель реактива Хагера (насыщенный раствор пикриновой кислоты) добавляют к 2 мл соответствующего растительного экстракта. Образование ярко-желтого осадка свидетельствовало о наличии алкалоидов [17].

Обнаружение антоцианов и бетацианинов

Аликвоту 1 мл 2N NAOH добавляли к 2 мл экстракта каждого растения и нагревали при 100 °C в течение примерно 5 минут для оценки присутствия антоцианов и бетацианинов.Образование голубовато-зеленого цвета указывало на наличие антоцианина, тогда как желтый цвет указывал на наличие бетацианина в тестируемых образцах растений [18].

Обнаружение антрахинона

Согласно [19] к испытуемым растительным экстрактам добавляли несколько капель 2% HCl. Образование красного осадка указывало на наличие антрахинонов в образцах, в то время как другая процедура тестирования [17] включала добавление 1 мл бензола к 1 мл испытуемого образца с последующим добавлением 10% раствора аммиака.Образование красного цвета указывало на наличие в образцах антрахинонов.

Обнаружение кумаринов

К 1 мл образцов растений добавляли 1 мл 10% раствора NAOH. Образование желтой окраски подтвердило наличие кумаринов в исследуемых образцах [19].

Обнаружение флавоноидов

Тест щелочных реагентов

Согласно [18] к 1 мл образцов растительного экстракта добавляли 1 мл 2 н. раствора NAOH.Появление желтого цвета указывало на наличие в образце флавоноидов.

FeCl

3 тест

Несколько капель раствора FeCl 3 добавляли к 1 мл образцов растительного экстракта. Черновато-красный осадок показал наличие в исследуемых образцах флавоноидов [17].

Обнаружение гликозидов

Тест Келлера-Киллани

Объем 1 мл ледяной уксусной кислоты добавляли к 1 мл образцов растительного экстракта и охлаждали.После охлаждения добавляли 2 капли FeCl 3 с последующим осторожным добавлением конц. H 2 SO 4 вдоль стенок пробирки. Кольцо красновато-коричневого цвета, образующееся на стыке двух слоев, указывало на существование гликозидов [17].

Обнаружение сапонинов

В соответствии с [19] к 2 мл образца растительного экстракта добавляли 2 мл дистиллированной воды и энергично встряхивали в течение 15 мин в мерном цилиндре. Слой пены толщиной 1 см и более подтвердил наличие сапонинов в испытуемых образцах.

Обнаружение танинов

FeCl

3 тест

Объем 2 мл 5% FeCl 3 был добавлен к 1 мл образцов растительного экстракта. Появление зеленовато-черной или темно-синей окраски подтверждало наличие дубильных веществ в исследуемых образцах [18].

Тест щелочных реагентов

Объем 2 мл 1 н. NaOH добавляли к 2 мл образцов растительного экстракта.Появление цвета от желтого до красного свидетельствует о наличии дубильных веществ [17].

Испытание бромной водой

Экстракты растений

растворяли в 50% спирте и фильтровали. Фильтрат вводили в реакцию с 3-4 каплями бромной воды. Появление желтовато-желтого цвета указывало на наличие конденсированных танинов в испытуемом образце растений, тогда как гидролизуемые танины не давали таких указаний [20].

Обнаружение терпеноидов

Аликвоту 1 мл 1% HCl добавляли к 2 мл образцов растительного экстракта и оставляли на 5-6 часов.Далее к нему добавляли 1 мл реактива Трим-Хилла и нагревали на кипящей водяной бане в течение 5-10 мин. Появление голубовато-зеленой окраски свидетельствовало о наличии терпеноидов [17].

Оценка фенола

Тест на эллаговую кислоту

Несколько капель 5%-ной ледяной уксусной кислоты добавляли к 1 мл образцов растительного экстракта, а затем добавляли несколько капель 5%-го раствора NaNO 2 . Образование мутно-коричневого цвета свидетельствовало о наличии в исследуемых образцах фенолов [17].

Обнаружение стерола

Тест Сальковского

В этой процедуре испытаний 5 мл хлороформа добавляли к 2 мл образцов растительного экстракта с последующим осторожным добавлением 1 мл конц. H 2 SO 4 вдоль стенок пробирки. Красновато-коричневый цвет в нижнем слое свидетельствовал о наличии стеролов в исследуемых образцах [17].

Обнаружение стероидов и фитостероидов

К 1 мл образца растительного экстракта добавляли равный объем хлороформа. После обработки смеси несколькими каплями конц. H 2 SO 4 происходило образование кольца . Появление кольца коричневого цвета указывало на наличие стероидов, тогда как появление кольца голубовато-коричневого цвета указывало на наличие фитостероидов в испытуемых образцах.

Обнаружение фитостерола

Тест Либермана-Бухара

Растительные экстракты фильтровали после обработки хлороформом. Полученный фильтрат обрабатывают несколькими каплями уксусного ангидрида, кипятят и охлаждают при комнатной температуре.Добавляли Conc.H 2 SO 4 , и образование кольца коричневого цвета на стыке указывало на наличие фитостеролов в испытуемых образцах.

Обнаружение флобатаннинов

К объему 1 мл образца растительного экстракта добавили несколько капель раствора аммиака (10%). Осадки розового цвета свидетельствовали о наличии флобатаннинов в испытуемых образцах.

Обнаружение тритерпеноидов

1 мл реактива Либерманна-Бухара (уксусный ангидрид + конц.H 2 SO 4 ) добавляли к 1,5 мл образцов растительного экстракта. Появление голубовато-зеленой окраски свидетельствовало о наличии тритерпеноидов в испытуемых образцах.

Обнаружение хинонов

1 мл конц. H 2 SO 4 добавляли к образцу растительного экстракта (1 мл). Появление красного цвета свидетельствовало о наличии хинонов в испытуемых образцах.

Обнаружение кислоты

Образец растительного экстракта объемом 1 мл обрабатывали раствором бикарбоната натрия.Образование шипения указывало на присутствие кислот в испытуемых образцах.

Обнаружение витамина С

ДНФГ тест

1 мл тестового раствора для растений подвергали взаимодействию с динитрофенилгидразином (растворенным в конц. H 2 SO 4 ). Образование желтого осадка свидетельствовало о наличии витамина С в испытуемых образцах.

Обнаружение белка

Ксантопротеидный тест

Образец растительного экстракта (1 мл) обрабатывали несколькими каплями концентрированной азотной кислоты в соответствии с этой процедурой теста.Образование желтого цвета указывало на присутствие белков в испытуемых образцах.

Биуретовый тест

Раствор

NAOH (40%) добавляли в равном объеме к 0,5 мг раствора растительного экстракта с последующим добавлением нескольких капель раствора CUSO 4 (1%). Появление фиолетовой окраски в исследуемых образцах свидетельствовало о наличии белков.

Обнаружение углеводов

Тест Бенедикта

Несколько капель реактива Бенедикта (щелочной раствор цитратно-медного комплекса) смешивали с образцами испытуемого раствора с последующим кипячением на водяной бане. Образование красновато-коричневого осадка свидетельствовало о наличии углеводов в испытуемых образцах.

Обнаружение масел и смол

Фильтровальная бумага для теста

Тестовые образцы растений наносили на фильтровальную бумагу. Появление прозрачной пленки на фильтровальной бумаге указывало на наличие масел и смол в тестируемых образцах растений.

Количественное определение фитохимических составляющих

Образцы экстракта P.jacquemontiana , показывающая наличие алкалоидов, фенолов, флавоноидов, дубильных веществ и сапонинов в качественном анализе, дополнительно определяли количественно с использованием стандартных процедур.

Количественное определение алкалоидов

Для количественного определения алкалоидов использовали методологию [22]. 1 г образца взвешивали в химическом стакане на 250 мл и добавляли к нему 150 мл 10% уксусной кислоты, приготовленной на этаноле. Смесь растворов накрывали и оставляли на 4 часа. По истечении необходимого времени смесь фильтровали и полученный фильтрат концентрировали на водяной бане до уменьшения его объема до четверти исходного объема.К образцу экстракта по каплям добавляли Conc.NH 4 OH до полного осаждения. Раствору давали отстояться, собирали осадок, промывали разбавленным раствором NH 4 OH и фильтровали. Полученный остаток полностью высушивают и взвешивают для расчета процентного содержания алкалоидов в испытуемом образце.

Количественное определение фенола

Прежде всего, был приготовлен обезжиренный образец путем обезжиривания 1 г образца 100 мл диэтилового эфира с использованием аппарата Сокслета в течение 2 часов.Количественное определение фенола проводили спектрофотометрическим методом. Обезжиренный образец кипятили 15 мин с эфиром (50 мл) для полного извлечения фенольных компонентов. 5 мл экстракта пипеткой перенесли в колбу на 50 мл и добавили 10 мл дистиллированной воды. После этого добавляли 2 мл раствора NH 4 OH, а затем добавляли 5 мл конц. амиловый спирт. После изготовления образцов до метки их оставляли реагировать на 30 мин для проявления окраски, которую измеряли при 505 нм относительно стандартной кривой галловой кислоты.Результаты были количественно выражены в форме GAE (мг эквивалентов галловой кислоты) на грамм сухого растительного экстракта/фракции.

Количественное определение флавоноидов

Для количественного определения флавоноидов в испытуемых образцах использовали процедуру [23]. Для этого образец растения массой 1 г повторно экстрагировали 100 мл 80%-ного водного метанола при комнатной температуре и, наконец, фильтровали через фильтровальную бумагу Whatman # 42 (125 мм). Фильтрат переносили в тигель и оставляли для полного выпаривания на водяной бане.После сушки образец взвешивают до получения постоянной массы.

Количественное определение танина

Содержание танина определяли по методологии [24] с небольшими изменениями. В соответствии с этим образец массой 500 мг взвешивали в пластиковой бутылке емкостью 50 мл. Добавляли 50 мл дистиллированной воды и оставляли для встряхивания на механическом шейкере в течение 1 часа. Его фильтровали и доводили до метки в мерной колбе на 50 мл. 5 мл фильтрата пипеткой отобрали в пробирку и тщательно смешали с 2 мл FeCl 3 (0.1 М) в HCl (0,1 н) и ферроцианиде калия (0,008 М). Поглощение при 120 нм измеряли спектрофотометрически относительно стандартной кривой галловой кислоты. Результаты были количественно выражены в форме GAE (мг эквивалентов галловой кислоты) на грамм сухого растительного экстракта/фракции [25].

Количественное определение сапонина

Определение Для количественного определения сапонина использовали процедуру [26]. 1 г образца растения диспергировали в 150 мл 20% водного этанола. Суспензию нагревали в течение 4 ч на водяной бане при 55°С при непрерывном перемешивании.Смесь после фильтрации повторно экстрагировали еще 150 мл 20% водного этанола. Объединенные экстракты упаривали на водяной бане до 40 мл при нагревании до 90°C. Концентрат переносили в делительную воронку после добавления и энергичного встряхивания с 20 мл диэтилового эфира. Полученный водный слой собирали, а эфирный слой отбрасывали. Эту стадию очистки повторяли. Добавляли 50 мл н-бутанола и объединенные экстракты н-бутанола дважды промывали 10 мл водного раствора NACl (5%). Оставшийся раствор переносят на водяную баню и нагревают до полного испарения.После выпаривания образцы сушили в печи до достижения постоянного веса. Содержание сапонинов рассчитывали как процент выхода образца.

Антибактериальный скрининг

Для антибактериального скрининга в этом эксперименте было протестировано всего 19 штаммов клинических бактерий. Бактериальные штаммы, состоящие из 7 бактериальных штаммов с множественной лекарственной устойчивостью (МЛУ), а именно. золотистый стафилококк (3884), золотистый стафилококк (6301), золотистый стафилококк (9861), Staphylococcus lugdunensis (6197), клебсиелл пневмонии (87005) БЛРС, клебсиелл пневмонии (82431) и Escherichia coli (52321). Было 12 других клинических изолятов, в том числе; золотистый стафилококк MRSA (12861), золотистый стафилококк (31414), золотистый стафилококк (5764), Staphylococcus lugdunensis (4338), синегнойной (27853), Коагулазо стафилококки (12731), Escherichia coli (22244), Klebsiella specie (34529) и Klebsiella pneumoniae (35967), тогда как 3 бактериальных штамма выделены из окружающей среды; Escherichia coli «a» , Escherichia coli «b» и Klebsiella pneumoniae «a» , протестированные в этом эксперименте.Бактериальные штаммы были приобретены на кафедре микробиологии Исламабадского университета Куэйд-и-Азам.

Для определения антибактериальной активности все образцы растений растворяли в ДМСО до конечной концентрации 50 мг/мл. Антибактериальную активность осуществляли диско-диффузионным методом [27]. Все бактериальные штаммы перед экспериментом культивировали в течение ночи в питательной агаровой среде (NA) при 37 °C. На следующий день около 100 мкл солевой суспензии, содержащей 10 8 КОЕ/мл бактерий, наносили на чашки со средой с питательным агаром.Инокулят конкретного тестируемого штамма равномерно распределяли по чашкам Петри путем протирания стерильными ватными тампонами в трех измерениях, чтобы гарантировать рост этого конкретного штамма на чашке. Стерильные диски из фильтровальной бумаги (диаметром 6 мм) пропитывали 20 мкл каждого исследуемого образца (1000 мкг/диск), сушили и помещали на поверхность сред. Отрицательные контроли готовили с использованием того же растворителя, в котором готовили образцы растительных экстрактов. Планшеты с инокулированными бактериями инкубировали при 37 °C в течение 24 часов.Анализы проводили в трех экземплярах против каждого бактериального штамма. Через указанное время диаметры зон ингибирования, образующихся вокруг дисков, измеряли в миллиметрах (мм) для определения активности тест-образцов в отношении различных штаммов [28]. 8-13 мм: низкое ингибирование; 14–19 мм: умеренное торможение; ≥ 20 мм: высокое ингибирование [29].

Бактериальное определение МИК и МБК

МИК (минимальная ингибирующая концентрация) и МБК (минимальная бактерицидная концентрация) оценивали для эффективных образцов растений, протестированных в ходе диско-диффузионного анализа.Бактериальные тесты проводились в бульоне с питательным агаром (NAB), использовались бактериальные культуры возрастом около 12 часов, и мутность их суспензии сравнивалась с мутностью 0,5 стандартов МакФарланда. Образцы растений сначала тщательно растворяли в 2,5% ДМСО, а затем разбавляли до достижения концентрации 512 мкг/мл в качестве самой высокой испытанной концентрации. Были приготовлены дополнительные двукратные серийные разведения для достижения концентрации от 8 до 512 мкг/мл в стерильных пробирках. Значения MIC образцов растений рассчитывали в отношении всех изолятов бактериальных штаммов с помощью комбинации анализа разведения в микролунках и p -йодонитротетразолия хлорида 0.2% (INT) калориметрический анализ [30, 31].

Вкратце, 96-луночные планшеты готовили путем распределения 95 мкл питательного бульона в каждую лунку, а затем 5 мкл инокулята. Из первично сформированных маточных растворов растительных экстрактов с концентрацией 512 мкг/мл отбирали по 100 мкл и распределяли в первые лунки. В последующие шесть последовательных лунок вниз вносили по 100 мкл в каждую из их серийных разведений, а в последнюю лунку не было соединения, кроме достаточного количества питательного бульона, ДМСО и 5 мкл инокулята, которые использовали в качестве отрицательного контроля.Конечный объем каждой лунки доводили всего до 200 мкл. Цефиксим готовили в питательном бульоне в концентрации от 2 до 128 мкг/мл и использовали в качестве стандартного препарата положительного контроля. Для полного покрытия планшета использовали стерильный герметик для планшетов, а затем использовали шейкер для планшетов со скоростью 300 об/мин для перемешивания содержимого каждой лунки в течение примерно 20 с. Планшеты с инокулированными бактериями инкубировали в течение 24 часов при 37 °C, а на следующий день к ним добавляли 40 мкл INT (0,2 мг/мл) с последующим 30-минутным инкубационным периодом. Жизнеспособные бактерии, присутствующие в образцах, превращали желтый краситель в розовый. МИК определяли как концентрацию образца, при которой среда не меняет цвет, что свидетельствует об ингибировании роста бактерий.

Для определения МБК из каждой лунки отбирали бульон и наносили на питательную агаровую среду на 24 часа при 37 °С. МБК определяли как минимально возможную концентрацию образцов растительного экстракта, при которой полностью уничтожаются инокулированные микроорганизмы [32].Отрицательный контроль включал NAB с ДМСО, тогда как цефиксим служил положительным контролем. Кроме того, для каждого бактериального штамма рассчитывали соотношение МБК/МИК, отражающее, является ли антибактериальный эффект бактерицидным или бактериостатическим [33].

$$ 1\le \left(\mathrm{MBC}/\mathrm{MIC}\right)\le 2=\mathrm{Бактерицидный}\ \mathrm{эффект} $$

$$ 4\le \left (\mathrm{MBC}/\mathrm{MIC}\right)\le 16=\mathrm{Bacteriostatic}\ \mathrm{effect} $$

Противогрибковый скрининг

Противогрибковая и противодрожжевая активность образцов растений была оценивается методом диско-диффузионного анализа [27]. Перед экспериментом штамм грибов и дрожжей культивировали в течение ночи в среде с декстрозным агаром Сабуро (SDA) при 30 °C. На следующий день 100 мкл суспензии дистиллированной воды, содержащей 10 4 спор/мл грибка и 10 6 КОЕ/мл дрожжей, наносили на чашки со средой Сабуро с декстрозным агаром. Изоляты грибов включали 7 штаммов грибов, а именно. Aspergillus Niger (АТСС 6275), Mucor грушевидной (АТСС 52554) , Fusarium solani (АТСС 36031), Aspergillus Flavus (ATCC 204304), Wickerhamomyces Аномалус (KU949595), Wickerhamomyces Аномалус (KU949596 ), Deboromyces hansenii и дрожжи Candida albicans (), полученные из Американской коллекции типовых культур (ATCC) или из окружающей среды.Штаммы грибов были приобретены на кафедре микробиологии Исламабадского университета Куэйд-и-Азам. Вкратце, стерильные диски диаметром 6 мм, содержащие 1000 мкг/диск каждого образца экстракта, помещали на поверхность среды. В качестве отрицательного контроля использовали ДМСО. Планшеты, инокулированные грибками и дрожжами, инкубировали при 28 °C в течение 72 ч и 48 ч соответственно. Противогрибковую и противодрожжевую активность оценивали по зонам ингибирования (мм) через заданный период [28]. Опыт проводили в трехкратной повторности.8-13 мм: низкое ингибирование; 14–19 мм: умеренное торможение; ≥ 20 мм: высокое ингибирование [29].

Определение МИК и МФУ для грибов

МИК (минимальная ингибирующая концентрация) и МФУ (минимальная фунгицидная концентрация) определяли для эффективных испытуемых образцов. Среда, используемая для определения MIC и MFC, представляла собой декстрозный бульон Сабуро (SDB). Культуры грибов и концентрация используемых тестовых образцов были аналогичны указанным выше для бактериальных исследований [30, 31]. Для определения МИК грибов инокулированные чашки инкубировали в течение 48 часов при 25-28 °C.Поглощение измеряли при 600 нм, подвергая планшет универсальному считывателю микропланшетов, и определяли рост микробов. МИК была определена как наименьшая возможная концентрация исследуемых образцов растительного экстракта, которая явно ингибирует видимый рост микроорганизмов. Для определения MFC из каждой лунки отбирали бульон и распределяли/высевали на декстрозно-агаровую среду Сабуро на 48 ч при 25–28 °C. MFC определяли как минимально возможную концентрацию образцов растительного экстракта, при которой полностью уничтожаются инокулированные микроорганизмы [32].Эти анализы были выполнены в трехкратной повторности. Отрицательный контроль включал среду SDB с ДМСО, а клотримазол служил стандартом положительного контроля. Кроме того, соотношение MFC/MIC рассчитывали для каждого штамма грибов и дрожжей, показывая, является ли противогрибковый эффект фунгицидным или фунгистатическим [33].

$$ 1\le \left(\mathrm{MFC}/\mathrm{MIC}\right)\le 2=\mathrm{Fungicidal}\ \mathrm{effect} $$

$$ 4\le \left (\mathrm{MFC}/\mathrm{MIC}\right)\le 16=\mathrm{Fungistatic}\ \mathrm{effect} $$

Статистический анализ

Данные выражены как среднее ± стандартное отклонение. Все экспериментальные анализы проводились в трехкратной повторности.

Сравнение фондапаринукса и эноксапарина при остром коронарном синдроме Мехта (руководитель проекта), Дж. П. Бассанд, А. Будай*, С. Хролавичюс (руководитель проекта), К.А.А. Фокс (сопредседатель), К.Б. Грейнджер, К. Джойнер* (председатель судейского комитета соревнований), Р.Дж.Г. Питерс, Л. Валлентин; Руководящий комитет: А.Авезум,* В. Боден, Э. Кардона,* Л. Черемузински, Дж. Кол, П. Дж. Коммерфорд,* Р. Диаз,* Д. Факсон, М. Флатер, Г. Фодор,* М.-Г. Францози, К. Грейнджер, Д. Халон, Д. Хант,* Н. Карацас,* М. Келтай,* М. Кенда, Дж.-Х. Ким, Ф. Ланас, * К.П. Лау,* Б.С. Льюис, Ж. Мораис,* Т. Мочетти, П. Паис, Э. Паолассо,* А. Пархоменко,* Б. Петраускене,* Л. Пьегас,* А. Пипилис, Д. Робаая, М. Руда, З. Румбольдт ,* Х.-Дж. Рупрехт, Э. Ситкей,* П.Г. Стег,* Э. Сван, П. Теру, В. Валентин,* Дж. Варигос, Дж. Вайц, Х. Уайт, П.Видимский*, Д. Ксавьер, Дж. Р. Чжу, а также члены оперативного комитета; Судейская комиссия: Вышеперечисленные лица, имена которых отмечены звездочками, а также С.

Америзо, К. Бонилья, С. Браеккен, Ю.К. Чан, В. Чен, М. Ченниаппан, Э. Коэн, Ю. Коттин, Л. Чиба, А. Чепиль, Х. Де Рэдт, Г. Финет, Э. Гардинале, Э. Гаксиола, А. Горецки, П. Грегор , О. Хаппола, М. Херас, Д. Химберт, О. Иркин, К. Исааз, С. С. Айенгар, П. Калвач, Л. Кеверс, Б. Клосевич-Васек, М. Лайне, Д. Лейс, Э. Лундстрем, Я.Lusic, Y. Lutay, A. Maggioni, A. Massaro, B.M. Майози, Т. Мулен, Дж. Нарендра, У. Наслунд, А. Петерс, М. Пеница, А. Перакис, П. Петерсен, С. Полик, С. Радхакришнан, Дж. Ренкин, Б. Стокинс, Р. Сундарараджан, К. Тигесен, Ф. Турацца, Э. Ван Белль, Х. Вик-Мо и Дж. Заборски; Совет по мониторингу данных и безопасности: П. Слейт (председатель), Дж.Л. Андерсон, Д.Е. Джонстон, Дж. Хирш, Д. ДеМетс, Д.Р. Холмс-младший; Офис проекта: Б. Микс (координатор), Р. Афзал и Дж. Пог (статистики), а также С. Боккалон, К. Крайслер, Б.Крэкнелл, К. Хорсман, Т. Хоскин, Б. Енджеевски, Дж. Джонсон, С. Котлан, М. Лоуренс, М. Смайли, К. Стивенс, Р. Яллап; Линия медицинской помощи: С. Коннолли, К. Демерс, П. Дж. Деверо, Дж. Хили, Э. Лонн, П. Маглуар, Р. МакКелви, К. Морилло, М. Натараджан, М. Рокосс, К. Тео, Н. Валеттас , Дж. Велианоу; Исследователи: Аргентина (889 пациентов) — J.P. Albisu, M. Amuchastegui, F.A. Bello, J.J. Блюгерманн, Дж.О. Боно, А. Каккаво, О.О. Карлеваро, А. Кассеттари, К. Кунео, Х.А. Фаррас, Х. Фузелли, М.Гарридо, Р. Герреро, Э. Хасбани, М.А. Хоминаль, А. Храбар, Л. Лобо Маркес, Х.Л. Лучарди, Л. Мартинес Риера, Э.М. Марзетти, Р. Мемоли, Р. Нордаби, А.Д. Орландини, М. Перес, Х.А. Пиасентин, Х.Р. Рамос, А.М. Рисоло, Дж. Сала, О. Саломоне, П.О. Шигель, Дж. Убальдини, М. Вико; Австралия (523) — Дж. Амерена, Л. Арнольда, Г. Арони, П. Бойд, П. Кэхилл, Д. Чу, Дж.Т. Коунселл, Д. Кросс, Дж. Эдингтон, Д. Фитцпатрик, П. Хикс, Дж. Д. Горовиц, М.К.Г. Хорриган, Г. Нью, Д. Оуэнсби, М. Шуман, П.Томпсон, Г. Таллок, Дж. Уэйтс, А. Уилан, Р. Зиффер; Австрия (184) — К. Хубер и Н. Йорданова; Бельгия (424) — К. Аль Шавафи, К. Конвенс, П. Куссеман, А. де Меестер, Д. Эль Аллаф, Л. Янссенс, О. Маркович, Л. Мюлдерманс, Дж. Розен, Ф. Сёр, Дж. Ван Лиерде, М. Вроликс; Бразилия (831) — П. Лиес, А.С. Карвалью, Э. Коста Шрамм, Р. Д’Ауреа Мора-младший, Х. де Кастро Амино, О. Дутра, Э. Р. Фернандес Маненти, К. Ган, Дж. Ф. Керр Сарайва , Э. Ки Хаяси, А. Лихтер, А.Лима Филью, Х.А. Марин-Нето, С.П. Минхото Тейшейра, Дж.А. Миранда Абрантес, Л. Морейра Барачоли, Дж. К. Николау, Л. Нигро Майя, К. Педернейрас Джагер, Дж. Перикл Эстевес, А. Рабело-младший, Р.Ф. Рамос, Г. Рейс, П. Росси, Ф. Росси душ Сантуш, М. Силвейра Тейшейра, Д. Соуто Силвейра, М.А.Б. Тейшейра Лемос, А. Тимерман, Г. Валдир Греке, Р. Ваз; Канада (1403) — Р. Бхаргава, С. Бронс, М. Колклаф, К. Констанс, П. Кости, А. Дацик, Т. Дэвис, Дж. Диодати, Р. Дюпюи, Х. Эллиотт, Д.А. Фелл, А.Ю. Фунг, P.J.S. Гладстон, Г. Госселин, Ф. Грондин, Т. Хьюн, И. Янцен, Т. Калапарамбат, Дж. Корндер, С. Куз, Р. Курицки, С. Лабель-Стимак, М. Ламот, К. Лозон, М. ЛеМэй, П. Ма, GC МакКаллум, А. МакКаллум, Д. Митчелл, М. Монтиньи, Н. Нгуен, М. Пирс, К.Дж. Пиставка, Т. Ребане, М. Рой, М. Сенаратне, Дж. Смит, Дж. Стимак, М. Трабулси, С. Визель, А. Уикс, Р. Задра, Р. Х. Циммерман; Чили (65) — М. Э. Алькаино, П. Кастро; Китай (341) — Дж. Чен, Дж. Чен, Дж. Л. Чен, В.Фан, Дж. Гэ, Д. Ху, Дж. Хуан, Г. Цзинсюань, Ю. Кэ, Х. Ма, Ю. Ву, С. Инсянь, Б. Ю, В. Чжу; Хорватия (312) — М. Бакула, М. Берговец, А. Лукин, Г. Миличевич, М. Падован, С. Полич, М. Рагуз; Чехия (1092) — М. Ашерманн, Я. Белоглавек, П. Бочек, М. Бранни, Т. Будесинский, Л. Грох, Ф. Хольм, П. Янски, П. Елинек, В. Йирка, М. Кайслерова, П. Конечны, Л. Лиза, М. Малый, Г. Марчинек, М. Осциповский, Я. Стумар, М. Ваха; Дания (77) — Т. Нильсен, Э. Вигхольт; Эстония (127) — П.Лаанметс, У. Соопольд, Дж. Войтк; Финляндия (113) — Х. Нявери, М. Ниемела, К. Пеухкуринен, П. Туомайнен, А. Юлитало; Франция (1005) — А. Пи, Г. Амат, Г. Бессед, Ж. Боша, Д. Кэрри, Б. Шарбонье, Ж. П. Колье, П. Дамбрин, Ж. Л. Дюбуа-Ранде, Э. Феррари, Р. Фуше , Г. Гролье, О. Жабурек, Р. Кетелерс, К. Халифе, Ф. Леруа, Т. Лоньон, И. Маккен-Мавье, Г. Монталеско, Г. Пакуре, Ж. Э. Пулар, Ж. Пюэль, М. Ришар, Ф. Шиле; Германия (858) — К.О. Бишоф, М.Buerke, U. Buerke, K. Dominick, H. Drexler, A. Feiler, H. Guelker, G. Haltern, H.A. Катус, В. Клаусс, М. Клутманн, О. Кет, Г. Мейнхардт, Т.М. Мюнцель, Т. Ничке, М. Офтердингер, Дж. Рибер, Б. Шиффер, К. Штангл, В. Штангл, Й. фон Даль, Б. Витценбихлер, У. Зеймер; Греция (398) — Д. Алексопулос, Н. Блассопулу, А. Кристон, И. Фотиадис, С. Фуссас, Н. Грапсас, Н. Мосхос, Э. Папастериадис, Д. Симеонидис, А. Тирологос; Гонконг (52) — WS Люнг, С.К. Ли; Венгрия (970) — Х.Арабаджиш, Й.Чиказ, Т.Данкс, З.Давидовиц, И.Эдес, Э.Фаркаш, Б.Херцег, С.Янош, А.Яноши, А.Кадар, Э.Кис, Э.Кристоф, Г.Лупкович, Л. Марк, А. Надь, Л. Надь, Ф. Пур, Л. Регос, Дж. Себо, Дж. Томчаньи, К. Тот; Индия (522) — А. Бхарани, Н. Чидамбарам, К. К. Харидас, С.С. Айенгар, А. Джейн, А. Джейн, П.Р.К. Джейн, Т.М. Джейсон, П.Г. Керкар, С. Найк, А. Намбьяр, Дж. Нарендра, Р. Б. Панвар, К. Парих, В.К. Пури, Т. Раджеш, М. Рамеш, Б. Сингх, С. Таникачалам, Р.К. Тонгия, С. Варма; Италия (779) — М.Барбьеро, Дж. Барделли, Д. Бернарди, Л. Болоньезе, Л. Каппони, Дж. Де Феррари, Р. Фанелли, Л. Фредиани, М. Галли, А. Иззо, А. Ломбарди, А. Мареста, А. Мартинони , К. Меллони, П. Менегетти, М. Меннуни, Л. Моретти, М. Орланди, Л.Г. Панкальди, С. Петронцелли, Г. Пиовачкари, А. Сальвиони, Д. Северини, П. Терросу, Р. Занини; Латвия (75) — А. Эрглис, У. Калниньш, Ю. Вербоенко, И. Закке; Литва (101) — Р. Кугене, Р. Залюнас; Малайзия (114) — А. Бин Отман, К.Х.Чи, С.К. Хиан; Мексика (142) — А. Кастро Гутьеррес, А. Крус Диас, А. Гарсия-Кастильо, М.К. Герреро, К. Лопес Моралес, Г. Рамос-Лопес; Нидерланды (1012) — S.C. Baldew, D.C.G. Басарт, Н. Клэпперс, М.К.Г. Дэниелс, Г.Дж. де Верд, Ф.Р. ден Хартог, I.H. G.M. Хендрикс, J.P.R. Herrman, M. Kofflard, K. Krasznai, H.R. Michels, I. Stoel, J.M. ten Berg, V.A.W.N. Уманс, Г.Дж. ван Бик, M.E.R.M. ван Даэле, Б.Дж. ван ден Берг, М.В.Дж. ван Гессен, П.М. ван Калмтаут, П. ван Россум, Ф.В. А. Верхойт, Э. П. Виргевер, A.J.A.M. Витаген; Польша (2465) — П. Ахремчик, П. Арасимович, Т. Барановска, Й. Бегайто, М. Брониш, П. Бушман, А. Чепель, М. Дальковски, М. Длузневски, Й. Гессек, Й.Х. Гоч, А. Горецкий, К. Яник, М. Янион, Д. Кавецкий, А. Клейнрок, П. Коморовский, В. Красовский, М. Краузе-Величка, С. Малиновский, Т. Новак, П. Новаковский, М. Огорек, М. Пеперка, В. Плута, Э. Пузио, М. Пузняк, Я. Рекош, П. Рыбка, Д. Сендровски, Т. Симиниак, М. Скура, М. Стопински, Р.Сетемей, М. Шолкевич, М. Шпайер, М. Труш-Глуза, Т. Вашировски, К. Вита, Й. Воднецкий, П. Воевода, Й. Замбржицкий, З. Зелински; Португалия (153) — П. Кардозу, Д.М. Каррагета, Д. Феррейра, М.В. Гомес, Л. Сантос; Россия (760) — М. Архипов, Ю. Белоусов, Р. Чарчоглян, И.Г. Гордеев, Н. А. Грацианский, Ю. Гринштейн, О. Хрусталев, В.А. Кокорин, А. Комаров, В. Козулин, Л.О. Минушкина, Е. Панченко, А. Панов, Е.С. Петрик, Р.М. Шахнович, С.В. Шалаев, Т.С. Сухинина, И.Р. Трифонов, Д.А. Затейщиков; Сингапур (68) — Б. Чунг Хо Кху, Х.К. Тан, Р.С. Тан; Словакия (174) — В. Гричак, З. Мотовска, П. Полячик; Словения (73) — В. Канич, Д. Ковачич, И. Кранец, Г. Вога; Южная Африка (196) — Дж. Баят, М. Р. Эссоп, Ф. Мариц, Дж. Д. Маркс, М. Нцехе, М.П. Преториус, Н. Ранджит, Х. Терон; Южная Корея (277) — I.H. Че, С.К.Чае, К.Х. Чоу, Н.С. Чанг, М.Х. Чжон, Си Джей Ким, Х.С. Ким, В. Ким, С.Ю. Рим, Э.К. Шин, Г.Дж. Шин; Испания (645) — М. Аламеда, Н. Алонсо-Оркахо, А. Бетанкур, Ф. Кальво, Х. Л. Карпинтеро Авельянеда, В. Дельгадо, О. Диас-Кастро, Э. Эсплугас, Р. Фаус, А. Фернандес -Ортис, А. Фрутос, П. Гойрена, М. Эрас, ФК Иглесиас, А.Р. Ллориан, К. Макайя, Х. Мансисидор, Р. Мельгарес, К. Паскуаль, Дж. М. Руис-Нодар, Дж. М. Саймон; Швеция (782) — С. Агеволл, П. Альстрем, М. Али, Л. Андерссон, С. Банд, К. Дигерфельдт, Х. Эрикссон, М. Форсгрен, Дж. Джабро, М. Янзон, Х. Джоборн , Н.Джонстон, Дж.Э. Карлссон, Л.Э. Ларссон, К. Линдерфальк, И. Лённберг, Т. Муо, У. Нэслунд, Дж. Олдгрен, Э. Пиль, М. Ризенфорс, Э. Шёлунд, И. Седерберг, А. Стьерна, Л. Свеннберг, П. Водлин; Швейцария (256) — А. Пагнамента, М. Пипер, М.Г. Росси, К. Вебер; Тайвань (103) — M.C. Пэн, Дж.Дж. Ченг, Ф.Т. Чан, К.Т. Куо, К.Д. Ценг; Украина (634) — И. Андреещева, Г.В. Дзяк, Л. Федчук, А. Гонтарь, О. Карпенко, Л. Кононенко, Е.А. Коваль, И. Ковальский, И. Крайц, Ю.Лутай, В. Нетяженко, С. Полывода, Ю. Прокопенко, И. Прудкий, Л. Руденко, Н. Середюк, В. Золотайкина; Соединенное Королевство (301) — Дж. Эджи, А. Ахсан, М. Брэк, А.Б. Бриджес, Дж. Бертон, И. Финдли, Д.С. Флак, Л. Рэдфорд, Р.Х. Робсон, Р. Сениор, И.Р. Старки; США (759) — Дж. Александр, З. Бабер, М. Кэмпбелл, Р. Капуто, Х. Чандна, Ю. Чандрашекхар, А. Чу, Р.Э. ДеРаад, Б. Друкен, А. Гоял, Д. Холли, А. Кемп, Д. Котлаба, М.Дж. Левин, Г.П. Миллер, Т. Найгаард, Д.К.Парих, К. Рамос, Э. Ривера, Р. Родригес, Б. Сангани, Дж.С. Уолдер. Здесь перечислены только исследователи из центров, в которых было не менее 12 пациентов. Полный список приведен в дополнительном приложении.

Клинические характеристики пациентов с ХОБЛ и хроническим бронхитом, связанным с курением биомассы, 2004–2014 гг.

1. Naeher LP, Brauer M, Lipsett M, et al. Воздействие дыма на здоровье: обзор. Inhal Toxicol . 2007;19(1):67-106. Дои: http://dx.doi.org/10.1080/08958370600985875.

2. Брюс Н., Рехфусс Э., Мехта С., Хаттон Г., Смит К. Загрязнение воздуха внутри помещений. В: Джеймисон Д., Бреман Дж., Мишам А. и др., ред. Приоритеты борьбы с болезнями в развивающихся странах. 2-е изд. Вашингтон: Издательство Оксфордского университета и Всемирный банк; 2006: 793-815.

3. Бальмес младший. Когда дым попадает в легкие. Proc Am Thorac Soc. 2010;7(2):98-101. doi: http://dx.doi.org/10.1513/pats.200907-081RM.

4. Смит К.Р.Биотопливо, загрязнение воздуха и здоровье. 1 изд. Нью-Йорк: Пленум Пресс; 1987.

5. Шпенглер Дж. Д., Самет Дж. Взгляд на загрязнение воздуха внутри и снаружи помещений. В: Самет Дж., Шпенглер Дж. Д., ред. Загрязнение воздуха внутри помещений: взгляд на здоровье. Балтимор: Издательство Университета Джона Хопкинса; 1991:1-29.

6. Овусу Боади К., Куйтунен М. Факторы, влияющие на выбор топлива для приготовления пищи, места приготовления пищи и здоровье органов дыхания в столичном районе Аккры, Гана. J Biosoc Sci. 2006;38(3):403-412.doi: http://dx.doi.org/10.1017/S0021932005026635.

7. Smith K, Mehta S, Maeusezahl-Feuz M. Загрязнение воздуха внутри помещений в результате использования твердых видов топлива в домашних условиях: сравнительная количественная оценка рисков для здоровья. В: Эззати М., Лопес А., Роджерс А., Мюррей С., ред. Глобальное и региональное бремя болезней, связанных с отдельными основными факторами риска. Женева: Всемирная организация здравоохранения; 2004:1435-1493.

8. Курми О.П., Семпл С., Симхада П., Смит В.К., Эйрес Дж.Г. ХОЗЛ и хронический бронхит, риск загрязнения воздуха внутри помещений твердым топливом: систематический обзор и метаанализ. Грудная клетка . 2010;65(3):221-228. doi: http://dx.doi.org/10.1136/thx.2009.124644.

9. Po JY, FitzGerald JM, Carlsten C. Респираторные заболевания, связанные с воздействием твердого топлива из биомассы на сельских женщин и детей: систематический обзор и метаанализ. Грудная клетка . 2011;66(3):232-239. doi: http://dx.doi.org/10.1136/thx.2010.147884.

10. Hu G, Zhou Y, Tian J, et al. Риск ХОБЛ от воздействия дыма биомассы: метаанализ. Сундук . 2010;138(1):20-31.doi: http://dx.doi.org/10.1378/chest.08-2114.

11. Torres-Duque C, Maldonado D, Perez-Padilla R, Ezzati M, Viegi G. Топливо из биомассы и респираторные заболевания: обзор доказательств. Proc Am Thorac Soc. 2008;5(5):577-590. doi: http://dx.doi.org/10.1513/pats.200707-100RP.

12. Брюс Н., Перес-Падилья Р., Албалак Р. Загрязнение воздуха внутри помещений в развивающихся странах: серьезная проблема для окружающей среды и общественного здравоохранения. Bull World Health Organ . 2000;78(9):1078-1092.

13. Лим С.С., Вос Т., Флаксман А.Д. и соавт. Сравнительная оценка риска бремени болезней и травм, связанных с 67 факторами риска и кластерами факторов риска в 21 регионе, 1990-2010 гг.: систематический анализ для Глобального исследования бремени болезней, 2010 г. Lancet . 2012;380(9859):2224-2260. doi: http://dx.doi.org/10.1016/S0140-6736(12)61766-8.

14. Масера ​​О.Р., Сааткамп Б.Д., Д.М. К. От линейного переключения топлива к множественным стратегиям приготовления пищи: критика и альтернатива модели энергетической лестницы. Мировая разработка. 2000;28:2083-2103. doi: http://dx.doi.org/10.1016/S0305-750X(00)00076-0.

15. Перес-Падилья Р., Регаладо Дж., Ведал С. и соавт. Воздействие дыма биомассы и хроническое заболевание дыхательных путей у мексиканских женщин. Исследование случай-контроль. Am J Respir Crit Care Med. 1996; 154 (3 часть 1): 701-706. doi: http://dx.doi.org/10.1164/ajrccm.154.3.8810608.

16. Регаладо Дж., Перес-Падилья Р., Сансорес Р. и соавт. Влияние сжигания биомассы на респираторные симптомы и функцию легких у сельских мексиканских женщин. Am J Respir Crit Care Med. 2006;174(8):901-905. doi: http://dx.doi.org/10.1164/rccm.200503-479OC.

17. Лозано Р., Нагави М., Форман К. и соавт. Глобальная и региональная смертность от 235 причин смерти для 20 возрастных групп в 1990 и 2010 гг.: систематический анализ для исследования глобального бремени болезней, 2010 г. Lancet . 2012;380(9859):2095-2128. doi: http://dx.doi.org/10.1016/S0140-6736(12)61728-0.

18. Vos T, Flaxman AD, Naghavi M, et al. Годы, прожитые с инвалидностью (YLD) для 1160 последствий 289 заболеваний и травм, 1990–2010 гг. : систематический анализ для исследования глобального бремени болезней, 2010 г. Ланцет . 2012;380(9859):2163-2196. doi: http://dx.doi.org/10.1016/S0140-6736(12)61729-2.

19. Murray CJ, Vos T, Lozano R, et al. Годы жизни с поправкой на инвалидность (DALY) для 291 заболевания и травмы в 21 регионе, 1990–2010 гг.: систематический анализ для Глобального исследования бремени болезней, 2010 г. Lancet . 2012;380(9859):2197-2223. doi: http://dx.doi.org/10.1016/S0140-6736(12)61689-4.

20. Институт показателей и оценки здоровья. Загрузка данных исследования глобального бремени болезней, 2010 г. (GBD 2010).2012 г.; Веб-сайт глобального обмена данными о здоровье. http://ghdx.healthmetricsandevaluation.org/global-burden-disease-study-2010-gbd-2010-data-downloads. Опубликовано в марте 2013 г. По состоянию на 25 октября 2013 г.

21. Ромье И., Риохас-Родригес Х., Маррон-Марес А.Т., Шилманн А., Перес-Падилья Р., Масера ​​О. Улучшение использования печей на биомассе в сельских районах Мексики: влияние на респираторное здоровье женщин. Am J Respir Crit Care Med . 2009;180(7):649-656. doi: http://dx.doi.org/10.1164/rccm.200810-1556OC

22.Hutton G, Rehfuess E, Tediosi F, Weiss S. Оценка затрат и выгод вмешательств в области энергетики и здравоохранения в домашних хозяйствах на глобальном и региональном уровнях: резюме . Женева, Швейцария: Всемирная организация здравоохранения; 2006.

23. Мортимер К., Гордон С.Б., Джиндал С.К., Ачинелли Р.А., Бальмес Дж., Мартин В.Дж., II. Загрязнение воздуха в жилых помещениях является основным предотвратимым фактором риска сердечно-легочных заболеваний. Сундук . 2012;142(5):1308-1315. doi: http://dx.doi.org/10.1378/chest.12-1596.

24. Барнс Д.Ф. ОК, Смит К.Р., ван дер Плас Р. Что заставляет людей готовить на усовершенствованных печах на биомассе? Сравнительный международный обзор программ Stove . Вашингтон, округ Колумбия: Всемирный банк; 1994.

25. Диетте Г.Б., Ачинелли Р.А., Бальмес Дж.Р. и соавт. Обструктивное заболевание легких и воздействие сжигания топлива из биомассы в помещении. Шар-Сердце. 2012;7(3):265-270. doi: http://dx.doi.org/10.1016/j.gheart.2012.06.016.

26. Тун М., Пето Р., Борхэм Дж., Лопес А.Д.Этапы сигаретной эпидемии на пороге второго столетия. Управление Тоб. 2012;21(2):96-101. doi: http://dx.doi.org/10.1136/tobaccocontrol-2011-050294.

27. Sood A, Petersen H, Blanchette CM, et al. Воздействие древесного дыма и метилирование промотора гена связаны с повышенным риском ХОБЛ у курильщиков. Am J Respir Crit Care Med. 2010;182(9):1098-1104. doi: http://dx.doi.org/10.1164/rccm.201002-0222OC.

28. Моран-Мендоса О., Перес-Падилья Дж. Р., Салазар-Флорес М., Васкес-Альфаро Ф.Заболевание легких, связанное с древесным дымом: клиническое, функциональное, рентгенологическое и патологическое описание. Int J Tuberc Lung Dis. 2008;12(9):1092-1098.

29. Eisner MD, Anthonisen N, Coultas D, et al. Официальное заявление о государственной политике Американского торакального общества: новые факторы риска и глобальное бремя хронической обструктивной болезни легких. Am J Respir Crit Care Med. 2010;182(5):693-718. doi: http://dx.doi.org/10.1164/rccm.200811-1757ST.

30.Смит К.Р., Самет Дж.М., Ромье И., Брюс Н. Загрязнение воздуха внутри помещений в развивающихся странах и острые инфекции нижних дыхательных путей у детей. Грудная клетка. 2000;55(6):518-532. doi: http://dx.doi.org/10.1136/thorax.55.6.518.

31. Диас Дж.В., Кофф Дж., Готвей М.Б., Нисимура С., Балмес Дж.Р. Отчет о болезни: случай болезни легких, связанной с древесным дымом. Перспектива охраны окружающей среды. 2006;114(5):759-762. doi: http://dx.doi.org/10.1289/ehp.8489.

32. Рамирес-Венегас А., Сансорес Р. Х., Перес-Падилья Р. и соавт.Выживаемость пациентов с хронической обструктивной болезнью легких за счет дыма биомассы и табака. Am J Respir Crit Care Med. 2006;173(4):393-397. doi: http://dx.doi.org/10.1164/rccm.200504-568OC.

33. Diaz E, Smith-Sivertsen T, Pope D, et al. Дискомфорт в глазах, головная боль и боль в спине среди гватемальских женщин майя, принимавших участие в рандомизированном испытании с применением печи. J Эпидемиол Общественное здравоохранение. 2007;61(1):74-79.doi: http://dx.doi.org/10.1136/jech.2006.043133.

34. Эллегард А. Слезы во время приготовления пищи: показатель загрязнения воздуха внутри помещений и связанных с этим последствий для здоровья в развивающихся странах. Окружающая среда Res. 1997;75(1):12-22. doi: http://dx.doi.org/10.1006/enrs.1997.3771.

35. Саха А., Кулкарни П.К., Шах А., Патель М., Сайед Х.Н. Заболеваемость глаз и использование топлива: опыт Индии. Occup Environ Med. 2005;62(1):66-69. doi: http://dx.doi.org/10.1136/oem.2004.015636.

36. Алим М.А., Саркер М.А., Селим С., Карим М.Р., Йошида Ю., Хамадзима Н.Заболевания органов дыхания у женщин, подвергшихся воздействию дыма от традиционного топлива из биомассы и газового топлива, в одном из районов Бангладеш. Environ Health Prev Med. 2013;19(2): 126-134 doi:http://dx.doi.org/10.1007/s12199-013-0364-4.

37. Сухсохале Н.Д., Нарлавар У. В., Фатак М.С. Загрязнение воздуха внутри помещений в результате сжигания биомассы и его неблагоприятные последствия для здоровья в центральной Индии: исследование воздействия и реакции. Indian J Community Med. 2013;38(3):162-167. doi: http://dx.doi.org/10.4103/0970-0218.116353.

38. Гонсалес-Гарсия М., Торрес-Дуке К.А., Бустос А., Харамильо С., Мальдонадо Д. Бронхиальная гиперреактивность у женщин с хронической обструктивной болезнью легких, связанная с древесным дымом. Int J Chron Obstruct Pulmon Dis. 2012;7:367-373. doi: http://dx.doi.org/10.2147/COPD.S30410.

39. Мишра В. Влияние загрязнения воздуха внутри помещений от сжигания биомассы на распространенность астмы среди пожилых людей. Перспектива охраны окружающей среды. 2003;111(1):71-78. Дои: http://dx.doi.org/10.1289/ehp.5559.

40. Шей М.А., Хессен Дж.О., Смит К.Р., Брюс Н., Маккракен Дж., Лопес В. Детская астма и древесный дым в помещении от приготовления пищи в Гватемале. J Expo Anal Environ Epidemiol. 2004; 14 (дополнение 1): S110-117.doi: http://dx.doi.org/10.1038/sj.jea.7500365.

41. Обье М., Кокрофт Д.В. Бронхиальная гиперреактивность, отличная от наблюдаемой при астме [на испанском языке]. Rev Fr Mal Respir. 1994;11(2):179-187.

42. Морейра М.А., Мораес М.Р., Силва Д.Г. и соавт.Сравнительное исследование респираторных симптомов и изменений функции легких у пациентов с хронической обструктивной болезнью легких, связанных с воздействием древесного и табачного дыма [на испанском языке]. J Бюстгальтеры Пневмол. 2008;34(9):667-674.

43. Camp PG, Ramirez-Venegas A, Sansores RH, et al. Фенотипы ХОБЛ у мексиканских женщин, подвергшихся воздействию дыма биомассы, по сравнению с табачным дымом. Eur Respir J. 2013.

44. Rivera RM, Cosio MG, Ghezzo H, Salazar M, Perez-Padilla R. Сравнение морфологии легких при ХОБЛ, вторичной по отношению к сигаретному дыму и биомассе. Int J Tuberc Lung Dis. 2008;12(8):972-977.

45. Martinez-Garcia MA, de la Rosa Carrillo D, Soler-Cataluna JJ, et al. Прогностическое значение бронхоэктазов у ​​больных хронической обструктивной болезнью легких средней и тяжелой степени тяжести. Am J Respir Crit Care Med. 2013;187(8):823-831. doi: http://dx.doi.org/10.1164/rccm.201208-1518OC.

46. Колаппан С., Субрамани Р. Связь между топливом из биомассы и туберкулезом легких: вложенное исследование случай-контроль. Грудная клетка. 2009 г.; 64(8):705-708. doi: http://dx.doi.org/10.1136/thx.2008.109405.

47. Мишра В.К., Ретерфорд Р.Д., Смит К.Р. Приготовление пищи с использованием топлива из биомассы увеличивает риск заболевания туберкулезом. Natl Fam Health Surv Bull. 1999(13):1-4.

48. Перес-Падилья Р., Перес-Гузман С., Баез-Салдана Р., Торрес-Крус А. Приготовление пищи с использованием печей на биомассе и туберкулез: исследование случай-контроль. Int J Tuberc Lung Dis. 2001;5(5):441-447.

49. Эззати М., Каммен Д.М.Количественная оценка воздействия загрязнения воздуха внутри помещений в результате сжигания биомассы на острые респираторные инфекции в развивающихся странах. Перспектива охраны окружающей среды. 2001;109(5):481-488. doi: http://dx.doi.org/10.1289/ehp.01109481.

50. Мишра В., Ретерфорд Р.Д. Приготовление дыма повышает риск острых респираторных инфекций у детей. Natl Fam Health Surv Bull. 1997(8):1-4.

51. Pandey MR, Boleij JS, Smith KR, Wafula EM. Загрязнение воздуха внутри помещений в развивающихся странах и острая респираторная инфекция у детей. Ланцет. 1989;1(8635):427-429. doi: http://dx.doi.org/10.1016/S0140-6736(89)-9.

52. Смит К.Р. Загрязнение воздуха внутри помещений и острые респираторные заболевания. Индийский педиатр. 2003;40(9):815-819.

53. Шетти Н., Шемко М., Ваз М., Д’Суза Г. Эпидемиологическая оценка факторов риска туберкулеза в Южной Индии: исследование случай-контроль. Int J Tuberc Lung Dis. 2006;10(1):80-86.

54. Slama K, Chiang CY, Hinderaker SG, Bruce N, Vedal S, Enarson DA.Сжигание твердого топлива в помещении и туберкулез: есть ли связь? Int J Tuberc Lung Dis. 2010;14(1):6-14.

55. Menezes AMB, Hallal PC, Perez-Padilla R, et al. Туберкулез и обструкция дыхательных путей: данные многоцентрового исследования в Латинской Америке. Eur Respir J. 2007; 30:1-6. doi: http://dx.doi.org/10.1183/0

36.00083507.

56. Падмавати С., Патхак С.Н. Хронический легочный кор в Дели. Тираж . 1959; 20:343-352. Дои: http://dx.doi.org/10.1161/01.CIR.20.3.343.

57. Sandoval J, Salas J, Martinez-Guerra ML, et al. Легочная артериальная гипертензия и легочное сердце, связанные с хроническим вдыханием бытового древесного дыма. Сундук. 1993;103(1):12-20.doi: http://dx.doi.org/10.1378/chest.103.1.12.

58. Pandey M, Basnyat B, Neupane R. Хронический бронхит и легочное сердце в Непале. Катманду: Медицинский фонд Мригендра; 1988.

59. Weitzenblum E, Chaouat A. Тяжелая легочная гипертензия при ХОБЛ: это отдельное заболевание? Сундук .2005;127(5):1480-1482. doi: http://dx.doi.org/10.1378/chest.127.5.1480.

60. Moreira MA, Barbosa MA, Queiroz MC, et al. Легочные изменения на КТВР у некурящих женщин с ХОБЛ из-за воздействия древесного дыма [на испанском языке]. J Бюстгальтеры Пневмол . 2013;39(2):155-163. doi: http://dx.doi.org/10.1590/S1806-37132013000200006.

61. Гонсалес-Гарсия М., Мальдонадо Гомес Д., Торрес-Дуке К.А. и соавт. Томографические и функциональные данные при тяжелой ХОБЛ: сравнение болезней, связанных с древесным дымом и курением [на испанском языке]. J Bras Pneumol .2013;39(2):147-154.

62. Montano M, Beccerril C, Ruiz V, Ramos C, Sansores RH, Gonzalez-Avila G. Активность матриксных металлопротеиназ при ХОБЛ, связанная с древесным дымом. Сундук . 2004;125(2):466-472. doi: http://dx. doi.org/10.1378/chest.125.2.466.

63. Montano M, Cisneros J, Ramirez-Venegas A, et al. Малоновый диальдегид и супероксиддисмутаза коррелируют с ОФВ1 у пациентов с ХОБЛ, связанной с воздействием древесного дыма и курением табака. Токсикол для ингаляций. 2010;22(10):868-874. doi: http://dx.doi.org/10.3109/08958378.2010.491840.

64. Sussan TE, Ingole V, Kim JH, et al. Источник топлива для приготовления пищи из биомассы определяет реакцию легких на загрязнение бытового воздуха. Am J Resp Cell Mol Biol .2014; 50(3): 538-548. doi: http://dx.doi.org/10.1165/rcmb.2013-0201OC.

65. Mehra D, Geraghty PM, Hardigan AA, Foronjy R. Сравнение воспалительного и протеолитического действия биомассы навоза и воздействия сигаретного дыма на легкие. PloS One . 2012;7(12):e52889. doi: http://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0052889.

66. Лал К., Датта К.К., Вачраджани К.Д., Гупта Г.С., Шривастава А.К. Гистоморфологические изменения в легких крыс после воздействия древесного дыма. Indian J Exp Biol . 1993;31(9):761-764.

67. Лю П.Л., Чен Ю.Л., Чен Ю.Х., Лин С.Дж., Коу Ю.Р. Экстракт древесного дыма индуцирует каспазо-независимый апоптоз, опосредованный окислительным стрессом, в эндотелиальных клетках легких человека: роль AIF и EndoG. Am J Physiol . 2005;289(5):L739-749.

68. Ramos C, Pedraza-Chaverri J, Becerril C, et al. Окислительный стресс и повреждение легких, вызванные кратковременным воздействием древесного дыма у морских свинок. Toxicol Mech Methods . 2013; 23(9): 711-722. doi: http://dx.doi.org/10.3109/15376516.2013.843113.

69. Аксу Ф., Капан Н., Аксу К. и др. Уровни С-реактивного белка повышаются у пациентов со стабильной хронической обструктивной болезнью легких независимо от курения и воздействия биомассы. J грудной Dis. 2013;5(4):414-421.

70. Vargas-Rojas M, Solleiro-Villavicencio H, Ramírez-Venegas A, Velázquez-Uncal M, Quintana R, Sansores-Martínez R. Различия в поляризации воспалительной реакции у пациентов с вторичной хронической обструктивной болезнью легких (ХОБЛ) к курению и воздействию дыма биомассы (аннотация). Постер представлен на ежегодном конгрессе Европейского респираторного общества; 8 сентября 2013 г.; Барселона, Испания. 2013: Плакат 595.

71.Перес-Рубио Г., Фальфан-Валенсия Р., Рамирес-Венегас А. и др. Генетические различия при ХОБЛ, вторичные по отношению к древесному дыму и курению табака (аннотация). Постер представлен на ежегодном конгрессе Европейского респираторного общества; 8 сентября 2013 г. Барселона, Испания. 2013: Плакат 1401.

72. Chapman RS, He X, Blair AE, Lan Q. Улучшение бытовых плит и риск хронической обструктивной болезни легких в Xuanwei, Китай: ретроспективное когортное исследование. БМЖ . 2005;331:1050. дои: http://dx.doi.org/10.1136/bmj.38628.676088.55.

73. Zuk M, Rojas L, Blanco S, et al. Влияние усовершенствованных дровяных печей на концентрацию мелких твердых частиц в сельских домах Мексики. J Expo Sci Environ Epidemiol . 2007;17(3):224-232. doi: http://dx.doi.org/10.1038/sj.jes.7500499.

74. Smith KR, McCracken JP, Weber MW, et al. Влияние снижения загрязнения воздуха в жилых помещениях на детскую пневмонию в Гватемале (RESPIRE): рандомизированное контролируемое исследование. Ланцет .2011;378(9804):1717-1726. doi: http://dx.doi.org/10.1016/S0140-6736(11)60921-5.

75. Смит К.Р., Пил Дж.Л. Имейте в виду разрыв. Перспектива охраны окружающей среды . 2010;118(12):1643-1645. doi: http://dx.doi.org/10.1289/ehp.1002517.

76. Celli BR, MacNee W. Стандарты диагностики и лечения пациентов с ХОБЛ: резюме документа с изложением позиции ATS/ERS. Евр Респир J . 2004;23(6):932-946. doi: http://dx.doi.org/10.1183/0

36.04.00014304.

77.Вестбо Дж., Херд С.С., Агусти А.Г. и др. Глобальная стратегия диагностики, лечения и профилактики хронической обструктивной болезни легких: краткое изложение GOLD. Am J Respir Crit Care Med. 2013;187(4):347-365. doi: http://dx.doi.org/10.1164/rccm.201204-0596PP.

78. Сансорес Р., Рамирес-Венегас А. Руководство по диагностике и лечению хронической обструктивной болезни легких [на испанском языке]. Неймол Цир Торакс . 2012;71(S1):1-89.

Геномная эпидемиология штаммов Klebsiella pneumoniae, продуцирующих карбапенемазу, в больнице Северной Португалии позволяет обнаружить ошибочно идентифицированный штамм KPC-3, продуцирующий Klebsiella variicola

Microorganisms 2020,8, 1986 17 из 18

23.

Шерри, Северная Каролина; Лейн, CR; Квонг, Дж. К.; Шульц, М.; Саит, М .; Стивенс, К.; Баллард, С.; Гонсалвеш да Силва, А.;

Зееманн Т.; Горри, CL; и другие. Геномика для молекулярной эпидемиологии и выявления передачи энтеробактерий, продуцирующих карбапенемазы

, в Виктории, Австралия, с 2012 по 2016 год. J. Clin. микробиол.

2019

,57.

[CrossRef] [PubMed]

24.

Караттоли, А.; Занкари, Э .; Гарсия-Фернандес, А.; Волдби Ларсен, М.; Лунд, О .; Вилла, Л.; Моллер Аареструп, Ф.;

Hasman, H. In silico обнаружение и типирование плазмид с использованием PlasmidFinder и многолокусной последовательности плазмид

типирование. Антимикроб. Агенты Чемотер. 2014, 58, 3895–3903. [CrossRef] [PubMed]

25.

Katoh, K.; Розевицкий, Дж.; Ямада, К.Д. Онлайн-сервис MAFFT: множественное выравнивание последовательностей, интерактивный выбор последовательности

и визуализация. Кратко Биоинформ. 2019, 20, 1160–1166. [CrossRef] [PubMed]

26.

Ларсен М.В.; Косентино, С .; Лукьянченко О.; Сапутра, Д.; Расмуссен, С.; Хасман, Х .; Зихериц-Понтен, Т.;

Аареструп, Ф.М.; Ассери, Д.В.; Лунд, О. Сравнительный анализ методов геномной таксономии. Дж. Клин. микробиол.

2014,52, 1529–1539. [CrossRef] [PubMed]

27.

Perdigao, J.; Модесто, А .; Перейра, А.Л.; Нето, О .; Матос, В .; Годиньо, А .; Фелан, Дж.; Чарльстон, Дж.; Спадар, А .;

Сешнс, П.Ф.; и другие. Секвенирование всего генома позволяет разрешить поликлональную вспышку, вызванную бета-лактамной и карбапенеморезистентной Klebsiella pneumoniae расширенного спектра действия

в португальской больнице третичного уровня.микроб.

Геном. 2020. [CrossRef]

28.

Пуарель, Л.; Боннин, Р.А.; Нордманн, П. Генетические особенности широко распространенной плазмиды, кодирующей карбапенемазу

OXA-48. Антимикроб. Агенты Чемотер. 2012, 56, 559–562. [CrossRef]

29.

Лю Л.; Е, М.; Ли, Х .; Ли, Дж.; Дэн, З .; Яо, Ю.Ф.; Оу, Х.Ю. Идентификация и характеристика антибактериальной системы секреции

типа VI в резистентном к карбапенемам штамме Klebsiella pneumoniae HS11286.Фронт. Сотовый

Заразить. микробиол. 2017,7, 442. [CrossRef]

30.

Hsieh, P.F.; Лу, Ю.Р.; Лин, Т.Л.; Лай, Л.Ю.; Ван, Дж.Т. Система секреции Klebsiella pneumoniae типа VI способствует

бактериальной конкуренции, клеточной инвазии, экспрессии фимбрий типа 1 и колонизации in vivo. Дж. Заразить. Дис.

2019, 219, 637–647. [CrossRef]

31.

Фонсека, Э.Л.; Рамос, Северная Дакота; Андраде, Б.Г.; Мораис, Л.Л.; Марин, М.Ф.; Висенте, AC Одноэтапная мультиплексная ПЦР

для выявления Klebsiella pneumoniae, Klebsiella variicola и Klebsiella Quaspneumoniae в клинической практике.

Диагн. микробиол. Заразить. Дис. 2017, 87, 315–317. [CrossRef]

32.

Huynh, B.T.; Пассет, В.; Ракотондрасоа, А .; Диалло, Т .; Керлегер, А .; Хеннарт, М .; Лозанна, А .; Хериндрини, П.;

Сек, А.; Берсион, Р.; и другие. Носительство Klebsiella pneumoniae в странах с низким уровнем дохода: устойчивость к противомикробным препаратам,

геномное разнообразие и факторы риска. Кишка. Микробы 2020, 11, 1287–1299. [CrossRef] [PubMed]

33.

Перес, Ф.; Рудин, С.Д.; Маршалл, С.ЧАС.; Кокли, П.; Чен, Л.; Крейсвирт, Б.Н.; Скорее П.Н.; Hujer, AM;

Толцис, П.; ван Дуин, Д.; и другие. OqxAB, помпа для оттока хинолонов и олаквиндоксов, широко распространен

среди изолятов Klebsiella pneumoniae с множественной лекарственной устойчивостью человеческого происхождения. Антимикроб. Агенты Чемотер.

2013,57, 4602–4603. [CrossRef] [PubMed]

34.

Rodrigues, C.; Бавлович, Дж.; Мачадо, Э.; Аморим, Дж.; Пейкс, Л.; Новаис, А. KPC-3-продуцирующая Klebsiella pneumoniae

в Португалии, связанная с ранее циркулирующими линиями, не относящимися к CG258, и необычными генетическими платформами

(Tn4401d-IncFIA и Tn4401d-IncN).Фронт. микробиол. 2016,7, 1000. [CrossRef] [PubMed]

35.

Caneiras, C.; Калисто, Ф .; Хорхе да Силва, Г.; Лито, Л.; Мело-Кристино, Дж.; Дуарте, А. Первое описание колистина

и устойчивых к тигециклину Acinetobacter baumannii, продуцирующих карбапенемазу KPC-3 в Португалии. Антибиотики

2018,7, 96. [CrossRef] [PubMed]

36.

Caneiras, C.; Лито, Л.; Майоралас-Алисес, С.; Диас-Лобато, С.; Мело-Кристино, Дж.; Duarte, A. Вирулентность и детерминанты резистентности

Klebsiella pneumoniae, выделенные из португальского университетского больничного центра

за 31-летний период.Энферм. инфекции микробиол. клин. 2019, 37, 387–393. [CrossRef] [PubMed]

37.

Bonnin, R.A.; Жуссе, А.Б.; Кьярелли, А .; Эмеро, К.; Глейзер, П.; Наас, Т .; Dortet, L. Появление

новой неклональной группы 258 клонов высокого риска среди изолятов Klebsiella pneumoniae, продуцирующих карбапенемазы

K. pneumoniae, Франция. Эмердж. Заразить. Дис. 2020, 26, 1212–1220. [CrossRef] [PubMed]

38.

Wyres, K.L.; Лам, MMC; Холт, К.Е. Популяционная геномика Klebsiella pneumoniae.Нац. Преподобный Микробиолог.

2020

,

18, 344–359. [CrossRef]

39.

Энне В.И.; Ливермор, Д.М.; Стивенс, П.; Холл, Л. М. Сохранение устойчивости к сульфонамидам у Escherichia coli

в Великобритании, несмотря на национальные ограничения на назначение лекарств. Ланцет 2001, 357, 1325–1328. [CrossRef]

40.

Paczosa, M.K.; Мексас, Дж. Klebsiella pneumoniae: переход в наступление с сильной защитой. микробиол. Мол.

Биол. 2016, 80, 629–661.[CrossRef]

Односторонний le dinaha tsa serame sa matšoafo

Serame sa matšoafo kapa serame sa matšoafo — lefu le a hlobaetsang le bakoang ke limela bongata ba kokwanahloko kapa baktheria, tšoauoa ka diso ea dinama tse nyenyane tse ea matšoafo. Ho fihlela joale, ho na le mefuta e mengata ‘me mefuta ea serame sa mats’oafo, e fapana ka ho iphetola ha lintho ba le lefu lena, matšoao, le maqiti a ea bakuli, empa re tla leka ho fana ka leseli feela ho atileng ка хо fetisisa ба бона ба.mefuta e sa tšoaneng ea serame sa matšoafo hlaha ho tswa ho ea ka bongata ba likokoana-hloko tse sa bonahaleng tse, hammoho le ka boitshireletso ba mmele wa motho ka mong. Hoa etsahala hore ponahalo ea tšoaetso e tšoanang e ka ba e fapaneng ka Batho ba sa tšoaneng. Ngaka e ‘ngoe en ntle ka hore na le litšobotsi tse ka bomong ba le mamello’ me le lefu lena, hobane ke senotlolo sa kalafo e atlehang.

serame sa matšoafo tloaelehileng

Мофута о tloaelehileng оа serame са matšoafo — ке setšoantšo kopanetsweng ea sehlopha се seholo са этиологии и fapaneng я serame са matšoafo хоре etsahala хо фета капа ка tlaase хо мелао-мотео е tšoanang.Phumano я serame са matšoafo tloaelehileng е Thehiloe X-Ray hlahloba matšoafong, ка lebaka ла tseo senola tjhebelopele itseng хо е ‘ngoe капа ка bobeli matšoafong. Ка цела эо лемоха односторонняя капа омимво пневмония. Bakeng sa mofuta или tloaelehileng oa serame sa matšoafo tšoauoa ка хо phahama bohale mocheso, хо khohlela haholo ка «Расти» sekhohlela, bohloko sefubeng, озноб. Likokoana-hloko ke пневмония joalo ke hangata ka ho fetisisa стафилококки, пневмококки, мала-ле-ба гемофильная палочка.Hangata ка хо fetisisa, mofuta ona oa lefu lena le hlaha ka Batho ba baholo.

ТОРС

E foromo нетипичный la serame sa matšoafo — ke setšoantšo kopanetsweng tsa mafu a matšoafo hore ntshetsa pele ka melao-motheo ea fapaneng ka ho feletseng ho feta ke pneumonia tloaelehileng. Хона джоале, бато ба бангата ба итута ликокоана-хлоко ца лефу лена, е монг оа бона — микоплазма. SARS ke ho fetisisa ka etsahala hore ebe ho etsahala hore bana ba, ‘me e tšoana le sefuba.Hа рентгенографическом диагностировании ikemiselitse feela hanyenyane ntshofala le meeli lerotho le и анализе mali ka kakaretso e nang le khutso. Ho sa tsotellehe ho ba bang ba se tšoane tloaelehileng ле нетипичный serame sa matšoafo (matšoao a, kalafo) a tšoana haholo. Ka linako tse ling likokoana-hloko нетипичный ka etsa hore tloaelehileng mokgwa wa lefu lena, ‘me sekgoeng. Ke ке hobane’ng ха Hangata haholo lingaka са кости сео е хо hlokahala хоре хо bolela ка хо тоба eo ea serame са mats’oafo ле hlaha монг ле е монг joalo.

Мефута и атиленг ка хо фетисиса ба атипичная пневмония

Mycoplasma serame sa matšoafo, hangata e le hlaha ka bana le bacha tlaase ho lilemo tse lilemo tse 15. Хо бато ба бахоло, le maloetse ке ка seoelo haholo. Likokoana-hloko tsa serame sa matšoafo ke thepa ea libaktheria ле likokoana-hloko ka nako e tšoanang.

Chlamydia serame sa matšoafo e boetse ke ho feta tloaelehileng bana. Свойства tšoanang ле хламидии микоплазмы, ‘ме ка lebaka likokoana-hloko цена у се ке ua ба ле leboteng ка seleng, ба manganga хо mefuta e itseng ea lithibela-mafu.Chlamydia omimvo serame sa matšoafo ke kotsi haholo-holo ho masea a, ‘me leha ho le joalo tepelletse maikutlong hae thata haholo ka mabaka a’ maloa.

Legioloznaya serame sa matšoafo hoo e batlang e ha e etsahala bana, ‘me ke lehlakoreng phello ea morao-rao oona tsamaisong кондиционер.

serame sa matšoafo bongata ba kokwanahloko hangata khahlanong le SARS, ntaramane le mafu a mang ho hema, empa ho ka ‘na ha se kamehla e be moemeli causative tsa likokoana-hloko ho.Ka linako tse ling ka ntshetsopele ya serame sa matšoafo bongata ba kokwanahloko ameha Klebsiella, E. coli, Staphylococcus le Streptococcus. Бонгата ба kokwanahloko omimvo serame са matšoafo hampe fumanoa ле хо ка etsa хоре liphello tse tebileng Bakeng са phelang, хо akarelletsa ле lefu.

Seo mantsoe a sebelisoang ho hlalosa serame sa matšoafo?

Karohano ea mefuta a hlobaetsang le a sa foleng ka ikwetlisetse ea kajeno ha e sa sebelisoa. lefu leha e le efe en nkoa e le bohale, e le poleloana e reng «a sa foleng ke pneumonia» e ya kenyeletswa ho tloha le tlotlontswe la bongaka.Ho itšetlehile ka diriswa la serame sa matšoafo arotswe сегментарное (khahloa ke karolo e ‘ngoe) palophatlo (amehang tshebetso yohle bolelelane) хо базальное (foci ba sebakeng karolo e tlase feela).

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован.

2019 © Все права защищены. Карта сайта